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常見免疫組化難題集錦(上)

更新時(shí)間:2011-11-27      點(diǎn)擊次數(shù):4285

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1、石蠟切片和冰凍切片的比較?
(1)要求做冰凍切片的不一定能做石蠟切片。因?yàn)樽魇炃衅瑫r(shí)要高溫烤片,可能會破壞組織的抗原性,如果組織的抗原性較穩(wěn)定,則可作石蠟切片;但是要求做石蠟切片的,可作冰凍切片。
(2)冰凍切片的優(yōu)點(diǎn)是能夠較好的保存組織的抗原免疫活性,做免疫組化時(shí)不需抗原修復(fù)這一步。缺點(diǎn)是細(xì)胞內(nèi)易形成冰晶而破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu),可能會使抗原彌散;切片厚度較石蠟的厚,做的片子沒石蠟的漂亮。當(dāng)你買一抗時(shí),目錄上都寫著做什么樣的切片,如果它寫著只能做冰凍,就不能做石蠟,如寫著兩者都可,那就都能做。
(3)石蠟切片的優(yōu)點(diǎn)可以保持組織細(xì)胞的形態(tài)結(jié)構(gòu),且容易存放在室溫,而冰凍切片比較麻煩,一定要存在-80度的低溫冰箱中,尤其是用來做原位雜交的的切片,為了防止RNA降解,保存一貫很重要。由于石蠟切片可以切到4微米左右,所以原位雜交探針容易滲透到組織中去,容易成功,而且得到的顏色/形態(tài)都較冰凍切片好。

2、一抗的選擇要點(diǎn)和技巧是什么?
(1)單克隆和多克隆抗體的選擇。由一種克隆產(chǎn)生的特異性抗體叫做單克隆抗體。單克隆抗體能目標(biāo)明確地與單一的特異抗原決定簇結(jié)合,就像導(dǎo)彈地命中目標(biāo)一樣。另一方面,即使是同一個(gè)抗原決定簇,在機(jī)體內(nèi)也可以由好幾種克隆來產(chǎn)生抗體,形成好幾種單克隆抗體混雜物,稱為多克隆抗體。在抗原抗體反應(yīng)中,一般單克隆抗體特異性強(qiáng),但親和力相對小,檢測抗原靈敏度相對就低;而多克隆抗體特異性稍弱,但抗體的親和力強(qiáng),靈敏度高,但易出現(xiàn)非特異性染色(可以通過封閉等避免)。
(2)應(yīng)用范圍的選擇。有的一抗只能用于Western blotting,或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等;甚至表明石蠟切片或冰凍切片。
(3)種屬反應(yīng)性的選擇(species reactivity)。這一點(diǎn)很重要,表明這種抗體可能存在種屬差異,且這種抗體適合檢測哪種種屬動物體內(nèi)的抗原。
(4)種屬來源,一般兔來源的多是多克隆;而小鼠來源的多是單克隆,但也有另外。根據(jù)此來源來選擇相應(yīng)的二抗。

3、在什么情況下使用TritonX-100?
(1)Triton X-100化學(xué)名稱為聚乙二醇辛基苯基醚,是一種去污劑。在免疫組織化學(xué)(>10um厚切片) 和免疫細(xì)胞化學(xué)中一般用Triton X-100 作為細(xì)胞通透劑,在膜上打孔。
(2)其作用原理:Triton X-100 可以溶解細(xì)胞膜、細(xì)胞核膜、細(xì)胞器膜上的脂質(zhì)而使抗體及大分子結(jié)構(gòu)的物質(zhì)進(jìn)入胞漿和胞核內(nèi),故在細(xì)胞免疫組化時(shí)尤為推薦使用,這樣抗體就能順利進(jìn)入胞內(nèi)與相應(yīng)抗原結(jié)合。
(3)Triton X-100既是一種表面活性劑,也有抗氧化作用,具體參閱:
http://www.dxy.cn/bbs/post/view?bid=68&id=12301317&sty=1

4、封閉血清的選擇原則是什么?
(1)膜上或切片上有剩余的位點(diǎn)可以非特異性吸附抗體,造成后續(xù)結(jié)果的假陽性!
(2)封閉血清一般是和二抗同一來源的,血清中動物自身的抗體,預(yù)先能和組織中有交叉反應(yīng)的位點(diǎn)發(fā)生結(jié)合,否則在后面的步驟中如果和二抗發(fā)生結(jié)合,會造成背景。
(3)也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能與一抗來源一致。
5、抗體孵育條件的比較?
(1)一抗孵育溫度有幾種:4度、室溫、37度,其中4度效果*;孵育時(shí)間:這與溫度、抗體濃度有關(guān),一般37度1-2h,而4度過夜和從冰箱拿出后37度復(fù)溫45min。
(2)二抗一般室溫或37度30min-1h,具體時(shí)間需要摸索。

6、一抗4度孵育后為什么要進(jìn)行37度復(fù)溫?
一種說法是防止切片從4度直接放入PBS易脫片;另外一種觀點(diǎn)是使抗原抗體結(jié)合更穩(wěn)定。一般不需要,但對表達(dá)較弱的抗原可能有用,4度和37度時(shí)分子運(yùn)動方式不同,前者分子碰撞機(jī)率和運(yùn)動速度小于后者,后者結(jié)合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。我更贊同后一種說法,因?yàn)槲覈L試把肝臟或睪丸片子從4度過夜拿出后,直接用PBS洗沒發(fā)生過脫片現(xiàn)象。

7、DAB顯色時(shí)間如何把握?
(1)DAB顯色時(shí)間不是固定的,主要由顯微鏡下控制顯色時(shí)間,到出現(xiàn)淺棕色本底時(shí)即可沖洗;
(2)DAB顯色時(shí)間很短(如幾秒或幾十秒)就出現(xiàn)很深的棕褐色,這很可能說明你的抗體濃度過高或抗體孵育時(shí)間過長,需要下調(diào)抗體濃度或縮短你的抗體孵育時(shí)間;
(3)此外,若很短時(shí)間就出現(xiàn)背景很深,還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全,需要延長封閉時(shí)間;
(4)DAB顯色時(shí)間很長(如超過十幾分鐘)才出現(xiàn)陽性染色,一方面可能說明你的抗體濃度過低或孵育時(shí)間過短(一抗4度過夜);另一方面就是封閉時(shí)間過長。

8、免疫組化結(jié)果如何分析?
(1)陽性著色細(xì)胞計(jì)數(shù)法。在40*光鏡下,隨機(jī)選擇不重疊的10個(gè)視野,人工或機(jī)器計(jì)數(shù)陽性著色細(xì)胞,每組3~6張不同動物組織切片,然后進(jìn)行組間比較即可。
(2)灰密度分析法。通過在不同組別和不同動物組織切片上選擇相同區(qū)域、相同條件下用image j進(jìn)行灰密度分析,然后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析即可。
(3)評分法。通過在光學(xué)顯微鏡下對組織切片分別按染色程度(0~3分為陰性著色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽性范圍進(jìn)行評分(1~4分為0~25%、26~50%、51~75%、76~100%),zui終可以分?jǐn)?shù)相加,再進(jìn)行比較。對于以上這幾種方法,各有利弊,請細(xì)心選擇。要想得到正確結(jié)果的前提是你要做出著色均勻、背景很淺的高質(zhì)量切片。

9、在什么情況下進(jìn)行組織抗原修復(fù),抗原修復(fù)的條件是什么?
(1)由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過程中,發(fā)生了蛋白之間交聯(lián)及醛基的封閉作用,從而失去抗原性。通過抗原修復(fù),使得細(xì)胞內(nèi)抗原決定族重新暴露,提高抗原檢測率。
(2)修復(fù)方法從強(qiáng)到弱一般分為三種,高壓修復(fù)、微波修復(fù)、胰酶修復(fù)。修復(fù)液也分為若干種(具體的可以查閱相關(guān)資料,大量的:中性的、高pH的等)。
(3)微波修復(fù),我們一般用6min*4次,效果不錯(cuò)。

10、內(nèi)源性過氧化物酶的滅活時(shí)間和濃度是什么?
(1)一般3%過氧化氫滅活時(shí)間短點(diǎn),可以10min左右;而0.3%過氧化氫則可以適當(dāng)延長封閉時(shí)間,一般10~30min。
(2)用甲醇配置過氧化氫比雙蒸水或PBS可能好在保護(hù)抗原和固定組織作用,過氧化氫孵育時(shí)間過長易引起脫片.
(3)現(xiàn)用現(xiàn)配,配好后4度避光保存。

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